Japanische Stechpalme

Die Krankheit entwickelt sich in zu nassem, schlecht durchlüftetem Substrat und befällt die Wurzeln sowie die Triebbasis. Die Wurzeln werden braun, faulen und verlieren die Rinde, die sich leicht abziehen lässt, und an der Stängelbasis entsteht eine dunkle, wässrige Fäule. Der oberirdische Teil welkt, vergilbt und stirbt trotz feuchter Erde ab – ein typisches Symptom, denn die geschädigten Wurzeln nehmen kein Wasser mehr auf. Besonders gefährdet sind Zimmerpflanzen, Sukkulenten und Kakteen (bei Überwässerung) sowie im Freiland Nadelgehölze, Rhododendren, Heidekrautgewächse und Erdbeeren auf staunassen Standorten. Der Prozess beginnt unauffällig an den Wurzelhaaren und Wurzelspitzen, die sich dunkel verfärben und absterben, woraufhin die Fäule zu den Skelettwurzeln und zum Wurzelhals fortschreitet. Gesunde, helle, aktive Wurzeln verschwinden – es bleibt eine dunkle, braunrostige oder schwärzliche, wässrige Masse, und die äußere Rindenschicht der Wurzel lässt sich wie ein Handschuh abstreifen und legt den verfärbten Zentralzylinder frei. Bei Bäumen und Sträuchern zeigt sich der Befall von Wurzelhals und Stammbasis (Stammgrundfäule) als dunkler, oft herablaufender Fleck, mitunter mit Ausfluss, und die Rinde ist an dieser Stelle feucht und eingesunken; bei Nadelgehölzen und Rhododendren beobachtet man ein Braunwerden und Absterben von unten oder aus der Kronenmitte bei noch feuchtem Boden. Charakteristisch ist das nesterweise (herdförmige) Auftreten der Symptome im Beet – dort, wo sich Wasser und Erreger örtlich ansammeln. Es lohnt sich, die beiden verursachenden Eipilz-Gattungen zu unterscheiden: Pythium befällt hauptsächlich Sämlinge und Feinwurzeln und verursacht Umfallkrankheit und Wurzelfäule in kühlem, nassem Substrat, während Phytophthora auch ältere, verholzte Pflanzen, Skelettwurzeln und den Wurzelhals angreift, stärker in wärmerem, mit Wasser gesättigtem Boden. Entscheidend für die Diagnose ist der Widerspruch der Symptome: Die Pflanze welkt und wirkt „trocken“, obwohl das Substrat nass ist – dies ist die Folge der zerstörten Wurzeln, nicht eines Wassermangels.

Das Symptom betrifft säureliebende Pflanzen — Hortensie, Rose, Rhododendron, Heidelbeere und andere —, die auf alkalischen oder kalkhaltigen Böden angebaut werden. Die Blattspreite vergilbt, während die Blattadern deutlich grün bleiben, was die charakteristische Interkostalchlorose ergibt. Die Symptome treten zuerst an den jüngsten Blättern an den Triebspitzen auf, da Eisen in der Pflanze wenig beweglich ist und nicht in die neuen Zuwächse verlagert wird. In extremen Fällen sind die Blätter fast weiß und ihre Ränder vertrocknen. Entscheidend ist, dass die Ursache meist kein Eisenmangel im Boden ist, sondern ein zu hoher pH-Wert, der die Aufnahme durch die Wurzeln blockiert. Zu beachten ist, dass nicht alle anfälligen Pflanzen in gleichem Maße säureliebend sind — die Rose bevorzugt einen leicht sauren bis neutralen Reaktionswert (etwa pH 6–7) und erkrankt auf stark alkalischen, kalkhaltigen Böden ebenfalls an Eisenchlorose, obwohl sie nicht so säureliebend ist wie Rhododendron oder Heidelbeere. Das Vergilbungsmuster ist sehr regelmäßig: Grün bleibt nicht nur das Hauptleitbündel, sondern das gesamte feine Adernetz, wodurch das Blatt wie eine grüne Spitze auf gelbgrünem Untergrund aussieht — das ist das sicherste Erkennungsmerkmal, das die Interkostalchlorose von der gleichmäßigen, ganzflächigen Vergilbung unterscheidet, die für Stickstoffmangel typisch ist. Die Symptome verstärken sich mit jedem weiteren Zuwachs: ältere Blätter am unteren Trieb sind mitunter noch grün oder nur leicht aufgehellt, und je jünger das Blatt, desto blasser ist es, bis hin zu fast weißen, zitronengelben Spitzen. Bei lang anhaltendem Mangel verbräunen und nekrotisieren die Ränder und Spitzen der jüngsten Blätter, die Triebe wachsen schwächer und bleiben kleiner, und bei der Heidelbeere sinken Ertrag und Fruchtqualität. Die Eisenchlorose ist nicht ansteckend — sie überträgt sich nicht von Pflanze zu Pflanze, sondern tritt gleichzeitig an allen Exemplaren auf, die am selben, zu alkalischen Standort wachsen, was ebenfalls hilft, sie von Infektionskrankheiten zu unterscheiden. Die Ausprägung kann im Saisonverlauf schwanken: kalter, nasser und verdichteter Boden, schlechte Wurzelbelüftung, Kalküberschuss, ein hoher Hydrogencarbonatgehalt im Gießwasser sowie eine Überdüngung mit Phosphor erschweren die Eisenaufnahme zusätzlich und verschärfen die Symptome selbst dann, wenn das Element im Boden nicht fehlt.

Auf Blättern, Trieben und Früchten bildet sich ein schwarzer, rußartiger Belag, der sich mit dem Finger teilweise abwischen lässt. Diese Pilze infizieren das Pflanzengewebe nicht – sie entwickeln sich auf dem süßen, klebrigen Honigtau, den Blattläuse, Weiße Fliegen, Wollläuse, Blattflöhe und Schildläuse ausscheiden. Der Belag entsteht also genau dort, wo diese Schädlinge saugen, und schadet vor allem dadurch, dass er die Blattspreite verdeckt, die Photosynthese einschränkt und die Pflanzen verunstaltet. Häufig ist das Symptom an Zitruspflanzen, Linde, Ahorn sowie an Zimmer- und Gewächshauspflanzen zu sehen. Der Belag ist mal dünn und spinnwebartig, mal dick, krustig und mattschwarz – je nach Pilzart und Menge des Honigtaus; an immergrünen Pflanzen kann er den ganzen Winter über bestehen bleiben. Ein entscheidendes Erkennungsmerkmal: Wischt man die Blattspreite ab, kommt unter der schwarzen Schicht gesundes, grünes Gewebe zum Vorschein – der Rußtau hinterlässt keine Flecken, Nekrosen oder Fraßstellen, denn er dringt nicht ins Blatt ein. Charakteristisch ist auch die Ausdehnung des Symptoms: Der Ruß setzt sich dort ab, wo der klebrige Honigtau heruntertropft, und erscheint daher nicht nur auf den Blättern, sondern auch auf Gegenständen unter der Pflanze – dem Gehweg, Gartenmöbeln, der Fensterbank oder der Karosserie –, was für sich genommen den Schädlingsbefall weiter oben verrät. Die Rußtaupilze selbst sind dunkel gefärbte (melaninhaltige) Saprophyten, weshalb die Schicht tiefschwarz ist. Der unmittelbare Schaden für die Pflanze ist meist mäßig – Schwächung durch Beschattung der Blätter, Vigorverlust, schlechteres Aussehen und geminderter Handelswert von Früchten oder Zierpflanzen –, doch ein dichter, langanhaltender Belag auf vielen Blättern schränkt Assimilation und Zuwachs tatsächlich ein. Den Rußtau betrachtet man am besten als sichtbares Signal dafür, dass sich weiter oben an der Pflanze (oder am Baum darüber) eine Kolonie saugender Insekten entwickelt.

Unbewegliche, braune oder gelbliche Schilde (1–4 mm), die an Stängeln und der Blattunterseite haften, besonders entlang der Blattadern. Leicht mit Auswüchsen an der Pflanze zu verwechseln. Sie saugen Pflanzensaft, verursachen Vergilbung und Schwächung und scheiden klebrigen Honigtau aus. Häufig an Ficus, Orchideen und Pflanzen mit festen Blättern. Der Sammelname umfasst zwei Gruppen mit unterschiedlicher Biologie. Die Deckelschildläuse (Diaspididae) besitzen einen harten, vom Körper getrennten Wachsschild, den man anheben kann — darunter kommt ein winziges, bein- und flügelloses Weibchen zum Vorschein; sie scheiden keinen Honigtau aus. Die Napfschildläuse (Coccidae) haben eine gewölbte, napfförmige, mit dem Körper verwachsene Hülle und sind es, die ihn reichlich absondern. Der klebrige Honigtau — die Domäne der Napfschildläuse und anderer honigtaubildender Schildläuse, nicht der Deckelschildläuse — lagert sich auf den Blättern ab und lockt Schwärzepilze (Rußtau, Rußtaupilzbelag) sowie Ameisen an, die die Kolonie vor Fressfeinden verteidigen. Das einzige bewegliche saugende Stadium ist die wandernde Larve (der sogenannte Crawler) — eine flache, winzige Larve, die nach dem Schlupf unter dem Schild der Mutter über die Pflanze auswandert, sich dann festsetzt, den Stechrüssel in die Leitgewebe treibt und die Beweglichkeit verliert; die erwachsenen Weibchen bleiben bis zum Lebensende unbeweglich. Die Männchen verpuppen sich und fressen als winzige, geflügelte, kurzlebige Insekten nicht. In beheizten Innenräumen vermehrt sich der Schädling das ganze Jahr über und bildet mehrere sich überlappende Generationen; im Freiland meist 1–3 Generationen, wobei begattete Weibchen oder unter dem Schild verborgene Eier überwintern. Die Fraßsymptome sind Vergilbung und vorzeitiger Blattfall, das Absterben von Trieben, Verkümmerung sowie Schwächung der Pflanze und sekundär ein schwarzer Rußtaubelag auf den mit Honigtau bedeckten Blättern. An Obstbäumen, die von der San-José-Schildlaus (Comstockaspis perniciosa) befallen sind, treten rund um die Saugstellen rötliche Verfärbungen auf, und stark besiedelte Äste sterben ab. Da die Schilde unbeweglich sind und sich farblich auf Rinde und Blattadern tarnen, wird der Befall leicht übersehen, bis Honigtau auftritt oder die Pflanze deutlich geschwächt ist — deshalb ist eine regelmäßige Kontrolle der Blattunterseiten und Triebwinkel entscheidend.

Eine Napfschildlaus, deren Weibchen braune, halbkugelige, stark gewölbte „Näpfchen“ (3–6 mm) bilden, die unbeweglich an Trieben, Zweigen und Blattansätzen sitzen. Sie saugen Saft und schwächen so die Pflanzen und scheiden reichlich Honigtau aus, auf dem sich schwarzer Rußtaupilz entwickelt, der Blätter und Früchte verunstaltet. Sie befällt Obstbäume (Pflaume, Pfirsich), Weinreben, Ziersträucher sowie Zimmerpflanzen. Sie gehört zu den Napfschildläusen (Weichschildläuse, Coccidae) und nicht zu den echten Deckelschildläusen — ihr brauner Schild ist der sklerotisierte Körper des Weibchens, der sich nicht von ihm ablösen lässt. Im polnischen Klima bildet sie meist eine Generation pro Jahr aus. Sie überwintert als Junglarve (zweites Stadium), die an Trieben und Zweigen, in Rindenrissen sowie an den Knospen festgeheftet ist. Im Frühjahr nehmen die Larven ihre Saugtätigkeit wieder auf, und die Weibchen wachsen rasch heran und verwandeln sich in die charakteristischen, aushärtenden „Näpfchen“. Unter dem Schild legt das reife Weibchen zahlreiche Eier ab — oft von mehreren Hundert bis über Tausend. Die daraus schlüpfenden wandernden Larven (sogenannte Crawler) verteilen sich meist Ende Juni bis Anfang Juli auf Blätter und junge Triebe, wo sie sich festheften und saugen; vor dem Blattfall kehren sie zum Überwintern an die Triebe zurück. Anzeichen eines Befalls sind geschwächtes Wachstum und das Absterben von Zweigen bei starkem Auftreten, klebriger, glänzender Honigtau auf den Blättern und unter der Pflanze, ein schwarzer Rußtaubelag, der die Photosynthese beeinträchtigt, sowie zahlreiche Ameisen, die den Honigtau abweiden. Larven und Weibchen sammeln sich in Zweiggabeln, an der Unterseite der Triebe, am Blattansatz sowie entlang der Blattadern und Blattstiele.

Winzige (0,3–0,5 mm) Spinnentiere, mit bloßem Auge kaum zu erkennen, die an der Blattunterseite saugen. Symptome: feine helle Sprenkel (Einstichstellen), mit der Zeit werden die Blätter grau, vergilben und vertrocknen. Bei starkem Befall zeigt sich ein feines Gespinst. Warme, trockene Luft fördert die Entwicklung — ein häufiges Problem bei Zimmerpflanzen im Winter in der Nähe von Heizkörpern. Spinnmilben sind keine Insekten, sondern Milben aus der Familie Tetranychidae — erwachsene Tiere haben 8 Beine (Larven nur 6). Am häufigsten tritt in Kulturen die Gemeine Spinnmilbe (Tetranychus urticae) auf: gelbgrüne Weibchen tragen an den Körperseiten zwei dunkle Flecken, überwinternde Weibchen verfärben sich orangerot. In Obstgärten ist die Obstbaumspinnmilbe (Panonychus ulmi) verbreitet, deren rote Eier gehäuft an der Triebrinde überwintern. Fraßmechanismus: Die Milben stechen die Zellen der Epidermis und des Mesophylls an der Blattunterseite an und saugen deren Inhalt aus, und die entleerten Zellen füllen sich mit Luft — daher die charakteristische, silbrig-graue, feine Sprenkelung, die von der Blattoberseite sichtbar ist (ähnelt einer mosaikartigen Verfärbung). Bei hoher Dichte werden die Blätter braun, rollen sich ein und fallen vorzeitig ab, und die ganze Pflanze schwächt sich und verliert an Zuwachs. Ein dichtes Gespinst zwischen Blättern und Triebspitzen erscheint erst bei fortgeschrittenem Befall und ist ein Signal für die Gefahr einer Verschleppung des Schädlings auf benachbarte Pflanzen. Der Entwicklungszyklus ist bei Wärme und Trockenheit sehr schnell — bei einer Temperatur von 25–30°C kann sich eine Generation in 1–2 Wochen abschließen, daher zahlreiche Generationen pro Saison und ein rasantes, exponentielles Anwachsen der Population. Die Weibchen legen kugelige, durchsichtige Eier an der Blattunterseite ab. Es überwintern begattete Weibchen (in Rindenritzen, Streu und Pflanzenresten) oder — bei der Obstbaumspinnmilbe — die Eier an der Rinde. Ein früher Befall wird leicht übersehen; bei der Diagnose hilft das Abschütteln eines Blattes über einem weißen Blatt Papier (wandernde Pünktchen werden sichtbar) oder das Betrachten der Blattunterseite mit einer Lupe.

Rüsselkäfer von 8–12 mm Länge, schwarz oder dunkelbraun, mit kurzem und breitem Rüssel, flugunfähig und nachtaktiv. Ihre Larven sind weiß, beinlos, C-förmig gekrümmt, haben einen braunen Kopf und leben im Boden. Symptome: Die erwachsenen Käfer nagen nachts charakteristische halbrunde Buchten in die Blattränder (Buchsbaum, Rhododendron, Bergenie, Erdbeere, Zimmerpflanzen), während die Larven Wurzeln, Zwiebeln und die Triebbasis anfressen, sodass die Pflanze plötzlich welkt und abstirbt. Am häufigsten ist der Gefurchte Dickmaulrüssler (Otiorhynchus sulcatus), seltener der Ovale Dickmaulrüssler (O. ovatus) und verwandte Arten. Entscheidend für die Populationsdichte ist die parthenogenetische Fortpflanzung (Jungfernzeugung): Die Populationen bestehen fast ausschließlich aus Weibchen, und ein einzelnes Weibchen legt ohne Mitwirkung eines Männchens mehrere hundert Eier in den Boden, wodurch ein Befallsherd rasch anwächst. Entwicklungszyklus: Die Käfer überwintern überwiegend als Larven (ein Teil als adulte Tiere) im Boden, die erwachsenen Tiere erscheinen im Spätfrühjahr und Frühsommer und betreiben etwa 3–4 Wochen lang einen Reifungsfraß an den Blättern, bevor sie mit der Eiablage beginnen; die Larven fressen von Sommer über den Herbst und erneut im zeitigen Frühjahr an den Wurzeln. Am gefährlichsten ist das Larvenstadium — die Larven benagen die Wurzeln und untergraben den Wurzelhals an der Triebbasis (Ringelung), wodurch die Pflanze trotz feuchtem Boden plötzlich welkt und sich leicht aus dem Substrat ziehen lässt; der Fraß der erwachsenen Käfer (halbrunde Buchten an den Blatträndern) verunstaltet die Pflanze vor allem und tötet sie selten. Besonders gefährdet sind Pflanzen in Gefäßen, wo der begrenzte Wurzelballen schnell zerstört wird. Die Käfer sind flugunfähig und verbreiten sich daher, indem sie über das Substrat wandern und — vor allem — mit befallenen Pflanzen und Substrat, was frisch gekaufte Topfsetzlinge zum Haupteinschleppungsweg macht.